Detalle STAN

Asesoramiento a docentes de distintos niveles educativos en temas relacionados a ecosistemas acuáticos, con asistencia en la elaboración y propuestas de trabajo para desarrollar con los alumnos. Contempla además la participación en actividades de aula y de campo. Temáticas: -Ecología de comunidades acuáticas. -Interacciones río- paisaje. -Concepto de cuenca. -Indicadores de integridad ambiental de ecosistemas acuáticos. -Macroinvertebrados bentónicos. – Tramas tróficas

Metodología

Talleres y clases teórico prácticas. Salidas de campo con utilización de redes para demostración de las técnicas. Presentación de especímenes de colección (únicamente los de uso didáctico), para identificación de adaptaciones morfológicas y uso de equipamiento óptico (lupas microscopio) de los laboratorios escolares.

Responsable Técnico:

• CECILIA BRAND – Ver Fic

Detalle STAN
Estudio sobre la biodiversidad de organismos asociados a los ambientes acuáticos, a fin de establecer procedimientos para manejar y preservar estos ambientes en el patrimonio natural de comunas, municipios, provincias y Estado Nacional.

Metodología
1- Relevamiento de información y antecedentes 2- Diseño del trabajo de campo: estudio a campo y laboratorio 3- Caracterización ambiental: Toma de muestras y análisis de calidad físico-química 4- Evaluación de fauna y flora acuática y terrestre. Indicadores biológicos 5- Elaboración de informe

Responsable Técnico:

• MARIA LAURA MISERENDINO – Ver Ficha

Detalle STAN

Curso taller sobre diversidad morfología y biológica de peces. Manejo de peces en la Patagonia. Efectos de la pesca y las siembras. Destinado a instituciones, organismos municipales, provinciales y nacionales relacionados a la pesca deportiva.

Metodología
Curso taller de 8 horas reloj con material para observación y guías de trabajo.

Responsable Técnico:

• CECILIA YANINA DI PRINZIO – Ver Ficha

Detalle STAN
Curso teórico-práctico presencial y/o taller destinado a alumnos de establecimientos educativos de nivel medio. El curso brinda un espacio formativo de profundización y ampliación de conocimientos en las Ciencias Biológicas, fortaleciendo la formación científica de los jóvenes. Temáticas: – Ecología de ambientes acuáticos. – Ecotoxicología. – Biología celular y molecular.

Metodología
Metodología: Clases teórico-prácticas, talleres y salidas de campo según los objetivos planteados en cada caso. Se entrega material para el estudio y realización de los trabajos de laboratorio.

Responsable Técnico:

• YANINA ANDREA ASSEF – Ver Ficha
• LUIS BELTRÁN EPELE – Ver Ficha

Detalle STAN
Evaluación de biodiversidad animal en sistemas productivos forestales y silvopastoriles. Este asesoramiento surge de la demanda de organismos técnicos, administrativos, productores y empresas privadas.

Metodología
1- Relevamiento de información en terreno 2- Relevamiento de información bibliográfica, ambiental y antecedentes 3- Análisis de datos 4- Elaboración de Informe con propuesta

Responsable Técnico:

• RICARDO JORGE CASAUX – Ver Ficha

Detalle STAN
Introducción a conceptos básicos de entomología, presentación, caracterización y descripción de la biología de los principales grupos de insectos acuáticos (Odonata, Ephemeroptera, Plecoptera, Trichoptera y Diptera), haciendo hincapié en la identificación de los grupos en el campo y en la descripción de ciclos biológicos y comportamiento. El curso está destinado a instituciones, organismos municipales, provinciales y nacionales y privados relacionados a la pesca deportiva.

Metodología
1- Clase teórica, 2- Clase práctica en terreno y 3- Clase práctica en laboratorio

Responsable Técnico:

• PABLO PESSACQ – Ver Ficha

Detalle del STAN

Evaluación de la presencia/ausencia e identificación especímenes fósiles en diferentes formaciones sedimentarias de Argentina. Este asesoramiento está dirigido a dar respuesta a la demanda de organismos técnicos, administrativos, productores y empresas, sobre todo en los estudios de línea base para obras que impactan directa o indirectamente sobre estos ambientes sedimentarios

Metodología

1)Búsqueda bibliográfica 2)Relevamiento de información en el terreno/prospección 3) Análisis de los datos obtenidos 4)Elaboración de Informe y propuesta.

Responsable Técnico:

• LAUREANO RAUL GONZALEZ – Ver Ficha
• GABRIEL MARIO MARTIN – Ver Ficha

Detalle del STAN

Utilizando metodologías estandarizadas se evalúa la calidad del agua de mallines. Además mediante la aplicación de índices de rápida obtención, se estima el estado de conservación de la biodiversidad acuática. Se podrían evaluar los posibles efectos de los usos de la tierra: ganadería, plantaciones o urbanizaciones

Metodología

1-Se releva la información en terreno. 2-En laboratorio, se procesan las muestras de organismos acuáticos. 3-Se analizan los datos. 4-Elabora el informe pertinente. En general se requiere de al menos dos cuerpos de agua, en lo posible uno de ellos mejor conservado, a fin de poder realizar comparaciones del estado del agua, la flora y la fauna autóctona.

Responsable Técnico:

• LUIS BELTRÁN EPELE – Ver Ficha
• MARTA GLADYS GRECH – Ver Ficha

Detalle del Stan

Capacitaciones teórico-práctico presenciales destinadas a alumnos de establecimientos educativos de nivel medio con orientación agrotécnica. Las prácticas profesionales propician un espacio formativo de profundización y ampliación de conocimientos en aplicaciones agropecuarias brindando una aproximación al desempeño profesional. Temáticas: Calidad de agua en ambientes rurales, biodiversidad en sistemas acuáticos rurales.

Metodología

Metodología: Clases teórico-prácticas, talleres y salidas de campo según los objetivos planteados en cada caso. Realización de trabajos de laboratorio.

Responsable Técnico:

• RICARDO JORGE CASAUX – Ver Ficha
• LUIS BELTRÁN EPELE – Ver Ficha

Detalle del Stan

Análisis cuali-cuantitativo de muestras de fitoplancton, zooplancton, perifiton y bentos marino para la elaboración de líneas de base, programas de monitoreo ambiental, entre otros. Destinado a organismos públicos o privados.

Metodología

Toma y análisis de muestras cuali-cuantitativas para fitoplancton, zooplancton, perifiton y bentos marino en laboratorio.

Responsable Técnico:

• RICARDO JORGE CASAUX – Ver Ficha

Detalle del Stan

Cuantificación de iones amonio, fosfato, nitrito y nitrato en muestras de agua mediante técnicas colorimétricas. La determinación de estos iones se realiza a través de la formación de complejos coloreados que pueden ser medidos espectrofotométricamente.

Metodología

Las determinaciones químicas se realizan de acuerdo a los métodos de análisis de laboratorio establecidos por la American Public Health Association (APHA)-Standard Methods for Examination of Water and Wastewater (18th Ed.): – Amonio (4500-NH3 F: método del fenol): El fenol alcalino y el hipoclorito reaccionan con el ion amonio para formar el compuesto azul de indofenol que es proporcional a la concentración de amonio. El color azul formado es intensificado por adición de nitroprusiato de sodio. – Fosfato (4500-P E: método del ácido ascórbico con previa digestión ácida): El molibdato de amonio y tartrato de antimonio y potasio reaccionan en medio ácido con el ortofosfato para formar un heteropoliácido-fosfomolíbdico- que se reduce por el ácido ascórbico a un complejo azul de molibdeno, intensamente coloreado. – Nitritos (4500-NO2- B): El nitrito se determina mediante la formación de un colorante azo de color púrpura rojizo por reacción de diazotación de la sulfanilamida con el diclorhidrato de N-(1-naftil)-etilendiamina a pH entre 2,0 y 2,5. – Nitratos (4500- NO3- H: reducción con sulfato de hidracina). Se determina el NO2 (originalmente presente) más el NO3 reducido, por diazotación de la sulfanilamida con el diclorhidrato de N-(1-naftil)-etilendiamina para formar un colorante azo altamente coloreado que se mide colorimétricamente. En todos los casos se prepara una curva patrón, que se lee junto a la muestra en un espectrofotómetro UV-Vis a la longitud de onda correspondiente para cada caso.

Responsable Técnico:

• YANINA ANDREA ASSEF – Ver Ficha

Detalle del Stan

En la producción de cerveza, el oxígeno es esencial para la propagación correcta de las células de levadura durante la fermentación. En la actualidad, el procedimiento habitual es controlar rigurosamente la concentración de oxígeno disuelto (± 0,5 ppm) durante la aireación del mosto para evitar la degradación de la calidad. De esta forma, se garantiza una fermentación constante y una pérdida mínima de cerveza por producción de levadura en exceso

Metodología

Medición de la concentración de oxígeno disuelto en mosto de cerveza. La determinación se realiza por triplicado utilizando una sonda de inmersión con método óptico de medición de luminiscencia.

Responsable Técnico:

• YANINA ANDREA ASSEF – Ver Ficha

Detalle del Stan

Exploración y el análisis estadístico de los datos, mediante el programa R vinculado a RStudio, con énfasis en el desarrollo de modelos lineales y aditivos: modelos lineales generales (LM), modelos lineales/aditivos generalizados (GLM y GAM) y modelos lineales/aditivos generalizados mixtos (GLMM y GAMM) bajo un enfoque frecuentista. Dirigido a estudiantes, investigadores y docentes de grado y post-grado, como así también a instituciones privadas y/o públicas de diversa índole.

Metodología

El desarrollo de la asesoría comprende las siguientes actividades: 1) Entrevista (presencial o virtual) con quien solicite el servicio para establecer el/los diseños y/o análisis estadísticos a desarrollar; 2) recepción de la base de datos para analizar; 3) exploración de datos y modelado; y 4) elaboración de un informe con los resultados obtenidos. Si se requiere, la asesoría puede incluir capacitación personalizada, realizando el análisis de datos en conjunto con el interesado.

Responsable Técnico:

• MARTA GLADYS GRECH – Ver Ficha

Detalle del Stan

Cuantificación de clorofila A y feofitina proveniente de muestras epilíticas o de columna de agua
mediante la extracción con acetona y su posterior determinación espectrofotométrica. Servicio dirigido a
organismos técnicos o administrativos, públicos o privados, productores y empresas. Se entrega un
informe con el resultado de la determinación.

Metodología

1-Las muestras provenientes del raspado de una superficie conocida de piedras (epilítica) o de un
volumen conocido de la columna de agua se filtran utilizando filtros de fibra de vidrio de 0.47 μm. 2-Los
pigmentos fotosintéticos son extraídos de estos filtros utilizando acetona al 90 % durante 24 h en
oscuridad. 3-La concentración de clorofila a se estima espectrofotométricamente utilizando la corrección
por feopigmentos mediante acidificación con HCl, de acuerdo a los métodos estándar. 4- De ser
requerido, la concentración de clorofila A también puede ser evaluada sin acidificación. 5-Se entregará
un informe técnico con los resultados. La obtención de la muestra epilitica o de columna de agua la
realiza el solicitante del servicio y es entregada en el laboratorio, pero de ser necesario, el equipo de
trabajo puede realizar el muestreo a campo, contemplando la instancia en el presupuesto
correspondiente.

Responsable Técnico:

• HORAK, CRISTINA NATALIA Ver ficha – ASSEF, YANINA ANDREA Ver ficha

Detalle STAN: Relevamiento y muestreo de plantas asociadas a un área de estudio para su posterior análisis, caracterización morfológica e identificación taxonómica de especies de plantas terrestres y acuáticas (macrófitas) de la estepa y del bosque andino patagónico. Se entrega informe técnico al finalizar la actividad. Dirigido organismos públicos y privados. Sector productivo, organismos de ciencia y técnica y profesionales independientes.
Metodología: 1-Visita al área de estudio. 2-Selección del diseño de muestreo para el área de estudio. 3- Relevamiento y colecta de la comunidad vegetal. 4-Conservación del material vegetal para la posterior identificación en laboratorio En caso de proceder a la colecta de material o muestras se tramitarán los permisos de colecta correspondientes ante la autoridad correspondiente. Se entrega informe técnico al finalizar la actividad.